Трихофития у щенков

Трихофития у щенков

ОГЛАВЛЕНИЕ

Введение

Глава 1. Стригущий лишай (трихофития) у собак

.1   Определение болезни. Эпизоотические данные. Характеристика возбудителей трихофитии у собак

1.2    Патогенез. Клинические признаки трихофитии у собак

Глава 2. Диагностика. Лечение. Профилактика и меры борьбы трихофитии у собак

Глава 3. История болезни щенка с диагнозом трихофития

Заключение

Список литературы

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность работы. Перед отечественной ветеринарией и микологией остро стоит вопрос о совершенствовании существующих и разработке новых методов диагностики дерматомикозов, а также индикации возбудителей микозов в объектах внешней среды. Изменение экологического фона в ряде республик и областей, процессы урбанизации и связанные с ними изменения структуры и границ нозоареалов этих заболеваний, вносят серьезные изменения в эпидемиологию и влияют на характер клинического течения современных зоонозных дерматомикозов у животных и их владельцев. Это способствует распространению зоонозных дерматомикозов в различающихся по климатогеографическим, экономическим и экологическим условиям ареалах страны [15].

Изучению проблем трихофитии, обусловленной зоофильнымн трихофитонами, посвящены исследования Н.А. Медведевой (1968), П.Н. Пестерева (1988), Э.В Чистяковой (1992). В них освещены особенности морфологии грибов-возбудителей, вопросы эпидемиологи, патогенеза, клиники и лечения данных микозов. Однако за последнее десятилетие изменились спектр возбудителей и клинические проявления трихофитии, что указывает на необходимость дальнейшего изучения этнологического своеобразия и клинических особенностей последней. Проблеме патогенеза трихофитии, в том числе и изучению процессов иммуногенез при данном микозе, посвящены исследования Ю.А. Медведева (1989) и других авторов [8].

Характерной особенностью всех дерматомикозов и трихофитии у собак, в частности, является видоизменение микробиоты. Если раньше наиболее частыми возбудителями дерматомикозов были антропофильные грибы, то сейчас на их долю приходится не более 1% микобиоты. Основными возбудителями микроспории и трихофитии стали зоофильные грибы. Для трихофитии - это Trichophyton verrucosum и T. mentagrophytes var. gypseum [5].

Цель работы: изучить особенности трихофитии у собак, составить историю болезни щенка с диагнозом трихофития.

Предмет работы: трихофития.

Объект работы: щенок с диагнозом трихофития.

Задачи работы:

1. Дать понятие трихофитии, эпизоотические данные, характеристику возбудителей трихофитии у собак.

. Рассмотреть патогенез и клинические признаки трихофитии у собак.

. Изучить методы диагностики, лечение и профилактику трихофитии у собак.

. Составить историю болезни курируемого щенка с диагнозом трихофития.

Методы исследования: анализ литературы по данной теме, синтез, абстрагирование, обобщение, наблюдение, медицинское исследование.

Объем и структура работы. Курсовая работа изложена на 37 страницах печатного текста. Курсовая состоит из введения, трех глав, включающих параграфы, заключения и списка использованной литературы. Список литературы включает 40 источников, из них 34 отечественных и 6 зарубежных авторов.

ГЛАВА 1. СТРИГУЩИЙ ЛИШАЙ (ТРИХОФИТИЯ) У СОБАК

.1      Определение болезни. Эпизоотические данные. Характеристика возбудителей трихофитии у собак

Трихофития - распространенное среди дерматомикозов собак заболевание, основными возбудителями которой являются Trichophyton verrucosum и Trichophyton mentagrophytes var. gypseum. Трихофития - природно-очаговая инфекция, эпидемические особенности и периодичность вспышек которой зависят от географических, экологических и ряда других факторов [11].

Источником инфекции является больной человек, животные или почва. Возбудители устойчивы к действию окружающей среды, их споры в высушенном состоянии сохраняют жизнеспособность в течение нескольких месяцев. Передача происходит при контакте с инфицированным человеком или животным либо через предметы обихода. В возникновении патологических процессов на коже определённую роль играют изменения рН среды. В современных природных условиях трихофития имеет ряд характерных особенностей - изменился видовой состав возбудителей. Основным возбудителем является фавиформный трихофитон, удельный вес которого составляет 80-85% [7].

Возбудитель данной болезни гриб, относящийся к роду Trichophyton. Мицелий гриба не отличается устойчивостью. Споры же весьма устойчивы: в помещениях сохраняются 4-10 лет, на шерсти животных - 12-15 месяцев, в почве - 1,5 года, в навозе и навозной жиже - 8 месяцев, патологическом материале (кожа, волосы) при высушивании - более двух лет. Клетки грибов состоят из оболочки протоплазмы, ядра и ряда включений. Имеют в своем составе жир, витамины, гликоген и кристаллы органических солей. В естественных условиях дерматофиты образуют мицелий, распадающийся на артроспоры, а в культуре на питательных средах - обычно обильный и разнообразный рост. Споры образуются внутри и вне мицелия. Большинство грибов являются аэробами [19].. mentagrophytes - споры мелкие - 3-5 мкм. Культуры растут быстро, колонии появляются на 3-5-й день, зрелые на 14-16-й день. Колонии белые, кремовые, темно-желтые, могут быть порошистые. Бархатистые. Встречаются спиральные окончания спор. Микроконидии многочисленные, округлые или овальные. Артроспоры отсутствуют. Микроконидии булавовидной формы (рис.1) [21].

Рис. 1. Trichophyton mentagrophytes var. gypseum

. verrucosum - крупноспоровые грибы от 5-ти до 8-ми мкм, поражают волос по типу эктотрикс (рис. 2). Их элементы в большинстве случаев располагаются вне волоса, споровой чехол находится у основания волоса и хорошо выражен. Грибы растут медленно на сусло-агаре или агаре Сабуро. Зрелые колонии появляются на 15-25 день. Колонии белые, серые, кожистые, возвышенные или плоские, складчатые или бугристые, растущий край ровный, лучистый, паутинистый. Мицелий ветвящийся, микроконидии (алейрии) овальные, грушевидные, артроспоры округлой формы. Хламидоспоры терминальные или интеркалярные. Микроконидии удлинённые [34].

Рис. 2. Trichophyton verrucosum

Поражения чаще всего обнаруживаются на коже головы (возле носа, глаз), конечностей, шеи; могут быть и на других местах. На пораженных участках вначале наблюдается шелушение кожи и обламывание волос, вследствие чего образуются плешины. Затем на них появляются маленькие, быстро засыхающие пузырьки, покрывающиеся серовато-белыми сухими корками. Участки поражения постепенно увеличиваются, расширяясь к периферии. У больных животных понижается прирост массы тела, снижается качество шерсти и уровень естественной резистентности [10].

Носителями патогенных дерматомицетов являются мыши, крысы и другие грызуны. У собак и кошек стригущий лишай возникает и легко распространяется при нарушении зоогигиенических правил содержания, поэтому особенно часто он встречается у бездомных, бродячих животных. Такие животные представляют наибольшую опасность и для человека (прежде всего для детей). Неблагоприятные погодные условия и поверхностные повреждения кожи способствуют проявлению стригущего лишая [25].

Наиболее часто микроспория и трихофития поражают молодых животных - щенков и котят в возрасте до 1 года. Распространению заболеваний способствует нарушение зоогигиенических и ветеринарно-санитарных правил содержания, кормления и эксплуатации животных (нарушение нормального микроклимата, скученное содержание, перемещения и перегруппировки животных, а также массовая контактная экспертиза во время выставочных мероприятий) [27].

В последние 30-40 лет зооантропонозную трихофитию с атипичной формой локализации патологического процесса не регистрировали. Преимущественным (97,9%) возбудителем заболевания является Trichophyton verrucosum. В 2011 году на территории Российской Федерации было зарегистрировано 2,3 случая трихофитии на 100000 собак. Наиболее часто трихофития встречается в Южном федеральном округе (показатель заболеваемости составил 5,7 и 6,7 на 100000 собак в 2010 и 2011 гг. соответственно). К регионам с высокой заболеваемостью трихофитией у собак относятся республики Башкортостан, Дагестан, Кабардино-Балкария, Ингушетия, Саха (Якутия). На территории Северо-Западного территориального округа Российской Федерации (РФ) трихофития у собак регистрируется спорадически, хотя в последние годы отмечается тенденция к постепенному росту заболеваемости. Этому способствуют активная миграция населения из южных регионов России и Средней Азии, ослабление ветеринарного контроля, слабый уровень знаний о клинической картине трихофитии специалистов-дерматологов и врачей других специальностей [19].

1.2    Патогенез. Клинические признаки трихофитии у собак

Возбудители трихофитии - антропофильные грибы, поражающие гладкую кожу, волосы и ногти. При обитании на коже воспалительные явления неглубокие, нерезко выраженные. Грибы располагаются в сердцевине волоса. Инфильтративно-нагноительная трихофития вызывается грибами, паразитирующими на человеке и животных, т.е. относящимися к группе зооантропофильных. По характеру и свойствам культур на питательных средах они классифицируются как Tr. mentagraphytes (var. gipseum), Tr. verrucosum (var. faviforme). Располагаясь по наружной поверхности волоса и образуя как бы чехол вокруг него. В зависимости от величины спор и их биологических особенностей выделяют мелкоспоровую разновидность, паразитирующую у мелких домашних животных, мышей, крыс, кроликов, морских свинок. Крупноспоровая разновидность обитает у крупных домашних животных - собак, лошадей, коров, телят, овец [39].

Трихофитоны размножаются в тканях, содержащих роговое вещество - керотин, который имеется в роговом слое эпидермиса кожи и в волосе. Возбудитель выделяет токсины и кератолитические ферменты, вызывающие поверхностное воспаление и разрыхление рогового слоя кожи. При условиях, благоприятных для развития, возбудитель проникает к устью волосяных фолликулов и в шейку волоса, разрушает кутикулу, внутреннее волосяное влагалище, корковое вещество, что ведет к нарушению питания волоса и его выпадению. В месте поражения развивается гиперкератоз [2].

Клинические признаки. Инкубационный период длится от недели до месяца. Заболевание протекает хронически и выражается в появлении на коже небольших безволосых пятен округлой формы, покрытых чешуйками и корочками асбестово-серого цвета (рис. 3). Чаще всего поражается кожа головы, шеи, конечностей. В запущенных случаях множественные пятна могут сливаться и захватывать значительные участки тела. Зуд отсутствует или слабо выражен [14].

Рис. 3. Трихофития у щенка

При глубокой форме трихофитии у собак происходит нагноение волосяных мешочков, под корками скапливается много гноя. Стригущий лишай может поражать и когти (онихомикоз). В этом случае они становятся толстыми и деформируются. В легких случаях заболевание протекает без зуда. На пораженных местах могут появиться корочки и струпья, которые позже начинают мокнуть. Собака лижет их и пытается чесать. Иногда отмечается обширное поражение кожи. В легких случаях заболевание приводит к выпадению волос и локальному шелушению кожи [18].

ГЛАВА 2. ДИАГНОСТИКА. ЛЕЧЕНИЕ. ПРОФИЛАКТИКА И МЕРЫ БОРЬБЫ ТРИХОФИТИИ У СОБАК

В последние годы отмечается клиническое многообразие трихофитии у собак, наличие атипичных и стертых клинических форм, что, в свою очередь, затрудняет своевременную диагностику. Атипичные формы заболевания необходимо дифференцировать с простым лишаем у собак, розовым лишаем Жибера, псориазом, микробной и себорейной экземой, атопическим дерматитом, гидраденитом, хронической пиодермией, вульгарным сикозом [20].

Поверхностная, инфильтративная и нагноительная формы трихофитии представляют собой последовательные стадии развития патологического процесса. Клиническая картина поверхностной трихофитии достаточно характерна. У собак появляются один или несколько очагов розового цвета, округло-овальной формы, с четкими границами, шелушением; по периферии очагов могут располагаться фолликулярные узелки. При инфильтративной форме очаги поражения резко очерчены, кожа гиперемирована, отечна, инфильтрирована и несколько возвышается над общим уровнем, могут встречаться единичные пустулы, корочки гнойно-геморрагического характера.

При развитии процесса на коже часто поражаются пушковые волосы, что приводит к развитию остиофолликулитов; при поражении головы или области бороды и усов волосы обламываются. Нагноительная форма трихофитии у собак чаще развивается на волосистой части головы либо в зоне роста бороды и усов вследствие дальнейшего прогрессирования микотического процесса.

Гиперемия кожи в области очага поражения усиливается, появляются множественные фолликулиты, сливающиеся в массивный инфильтрат, значительно выступающий над поверхностью кожи и болезненный при пальпации. Как правило, при нагноительной форме трихофитии наблюдается увеличение регионарных лимфатических узлов, повышение температуры тела, нарушение общего состояния животного. При инфильтративно-нагноительной форме трихофитии волосы в очагах поражения очень легко эпилируются. Зачастую при развитии рубцовых изменений кожи волосы полностью не восстанавливаются [14].

Клинический диагноз трихофитии у собак должен быть подтвержден данными лабораторных исследований. В обычной клинической практике при трихофитии ограничиваются микроскопическим и культуральным методами исследования зараженного материала. Перед микроскопией пораженные объекты (кожные чешуйки, волосы, покрышки пузырьков) предварительно обрабатывают 10%-ным раствором едкого калия или 25%-м раствором натрия гидроксида для просветления препарата. Поэтому часто этот метод диагностики называют КОН-тестом. Микроскопическая идентификация микромицетов напрямую в клиническом образце является быстрым диагностическим методом, однако наличие ложноотрицательных результатов более чем в 15% случаев указывает на недостаточную специфичность и чувствительность метода. Данным методом можно выявить наличие дерматомицетов, но идентификация их не представляется возможной. Также этот тест ограничивает субъективная оценка врача-лаборанта. Так, чувствительность прямой микроскопии при грибковом поражении головы животного, по данным ряда авторов, варьирует от 67 до 91% [31].

С целью повышения специфичности и чувствительности разработан ряд методик, позволяющих просто и быстро идентифицировать различные виды микромицетов. В микологических лабораториях просветление препаратов для микроскопического исследования проводят 15-30%-ным раствором КОН, в который добавляют 5-10%-ный раствор темно-синих чернил фирмы «Паркер» (Parkers Superchrome Blue-Black Ink). При этом методе гифы и споры дерматомицетов окрашиваются в голубой цвет [25].

В последнее время разработан и внедрен в практику новый метод микроскопии нативных препаратов с окраской калькофлюором белым. Этот реагент в качестве отбеливающего средства используется в текстильной и бумажной промышленности. Совместное применение калькофлюора белого с КОН позволяет выявлять как молодые, так и зрелые гифы дерматомицетов. Применение метода окраски калькофлюором белым при микроскопической диагностике дерматомикозов позволяет на 10% увеличить выявляемость грибковой инфекции по сравнению со стандартным КОН-методом. Краска флуоресцирует в ультрафиолетовом свете (при коротковолновом облучении). Визуализация проводится под флуоресцентным микроскопом [40].

Для окрашивания гистологических срезов волос широко применяют метод PAS (периодическая кислотная реакция) окрашивания. Последний мало отличается от процедуры окрашивания тканевых срезов и сопровождается окраской определенных гликанов (полисахаридов), находящихся в клеточной стенке дерматомицетов. С целью выявления наиболее информативного метода диагностики J. Weinberg и соавт. сравнили четыре диагностических теста, а именно: микроскопический, культуральный, метод люминесцентной микроскопии с белым калькофлюором и биопсии ногтя. Авторы установили чувствительность микроскопии в 80%, культурального метода в 59% и биопсии ногтя - в 92% по сравнению с люминесцентной микроскопией с белым калькофлюором, который был выбран в качестве основного метода. Преимуществом всех вышеперечисленных методик микроскопии является их быстрая и простая техника проведения, однако они не дают возможность идентифицировать вид микромицетов [12].

Для установления видовой принадлежности возбудителя проводится посев материала на питательную среду Сабуро с последующей идентификацией выделенной культуры. Известен способ выделения дерматомицетов на плотной среде Сабуро с селективными добавками в виде пенициллина (20000 ЕД) или стрептомицина (40000 ЕД), гентамицина (0,005 г/л), левомицетина (0,16 г/л). Недостатком данной культуральной среды является медленный рост выделяемых культур, что обуславливает длительные сроки диагностики. С целью сокращения сроков роста культур рядом авторов предложены различные модификации состава среды Сабуро. Описан способ культивирования дерматофитов в жидкой среде, содержащей кератин [28].

З.Р. Хисматуллиной и соавт. был разработан способ идентификации дерматомицетов с использованием культуральной среды Сабуро с гидролизатом кератина, позволяющий сократить сроки выделения грибов из материала больного животного. Увеличение скорости роста культур микромицетов происходит при содержании в питательной среде гидролизата кератина выше 20 г/л. Высев дерматофитов предлагаемым способом позволяет проводить идентификацию для Tr. mentagrophytes var. gypseum на 4-5-й день, для Tr. verrucosum - на 7-8-й день [33].

Одной из попыток усовершенствовать и обеспечить массовую культуральную диагностику дерматомицетов является разработка тестовой среды для дерматофитов (DTM, delmatophyte test medium), содержащей агар Сабуро с антибиотиками, циклогексимидом и индикатором роста культуры дерматофитов. Внедрение среды DTM произвело на свет концепцию «офисного культивирования», при котором появилась возможность наблюдать рост в одноразовых чашках не в специальной лаборатории, а непосредственно в кабинете врача-ветеринара, поскольку рост культуры идет при комнатной температуре [34].

Даже при соблюдении всех правил сбора материала, при наличии оборудования и высоком профессионализме сотрудников лаборатории число выявляемых положительных результатов культурального исследования весьма невелико. Культуральный метод - это специфический диагностический тест, который требует до 8 недель времени, прежде чем результат будет получен. Однако при этом, по данным зарубежной литературы, доля положительного культурального исследования едва достигает 50%, в отечественных исследованиях возбудитель не удается выделить и в 64% случаев. Это обусловлено техническими погрешностями (нарушение правил забора материала, его транспортировки и т.д.), но чаще всего - проведением предшествующей (как правило, местной) антифунгальной терапии у собак их владельцами. Владельцы собак часто занимаются их самолечением с применением наружных антимикотических средств, что приводит не только к изменению клинической картины, но и, естественно, к появлению ложноотрицательных результатов исследования при дерматофитиях [30].

Некоторыми авторами неоднократно предлагались разные диагностические подходы, которые позволили бы усовершенствовать идентификацию грибковой инфекции, дополнить или заменить классические методы. Поэтому, помимо рутинных микроскопического и культурального методов, активно изучаются новые возможности, такие как определение антигена Tr. verrucosum var. verrucosum методом иммуноферментного анализа, а также прямая ДНК-диагностика дерматомицетов. Молекулярно-биологические методики, такие как РСИ-RFLP, ПЦР реального времени и мультиплексный ПЦР, были адаптированы для определения дерматомицетов в клинических образцах. Эти молекулярные методы имеют хороший потенциал для прямого определения дерматомицетов, вместе с тем они еще нуждаются в стандартизации для обычных клинических лабораторий [1].

В 2004 году в России были разработаны и успешно применены в клинических условиях первые генетические зонды для прямой диагностики дерматофитии кожи, волос и ногтей. Данный проект был инициирован в 2003 году Национальной академией микологии с целью изучения возможности применения полимеразной цепной реакции (ПЦР) в выявлении Trichophyton rubrum в клинических образцах. Затем был создан аналогичный метод для Trichophyton mentagrophytes [15].

Лишь несколько авторов сравнивали в клинических образцах КОН-микроскопию и культивирование с ПЦР-методом. В исследовании Nagao и соавт. определили Trichophyton rubrum посредством «вложенной» ПЦР, имеющей мишенью ген внутреннего транскрибируемого спейсера 1 (ВТС1), который был негативен как по данным КОН-микроскопии, так и по данным культивирования. Yan и соавт. сравнили случайно праймируемую ПЦР с общепринятыми методами показали, что случайно праймируемая ПЦР - это более быстрый, чувствительный и специфичный метод для диагностики дерматофитий. Подобных исследований в отношении возбудителей трихофитии у собак не проводилось [28].

В соответствии с общими тенденциями, наблюдаемыми в сфере диагностики, ПЦР реального времени может в будущем стать заменой методам прямой микроскопии и культивирования. Высокая цена ПЦР на сегодняшний день и редкость применения этого метода в ветеринарных клиниках является лимитирующим фактором, но это может измениться в результате уменьшения цен на рынке реагентов и появлением сбережений, вызванных заменой общепринятой диагностики [6].

Таким образом, традиционные доступные методы лабораторной диагностики трихофитии у собак не всегда позволяют определить вид возбудителя и соответственно выбрать оптимальный метод лечения. Назревшая необходимость в методах быстрой и точной идентификации возбудителей открывает перспективы для внедрения в диагностику данного заболевания такого современного, высокочувствительного и специфичного метода исследования, как метод полимеразной цепной реакции [13].

После подтверждения диагноза трихофитии у собак с лечебной целью вводят 2- или 3-кратно вакцину против трихофитии. Одновременно назначают средства, обладающие фунгистатическими и фунгицидными свойствами. В начальном периоде болезни пораженные места обрабатывают раствором салициловой кислоты на 5%-й настойке йода, а также жидкостями и пастами, обладающими фунгицидными свойствами. Достаточно широко представлен ряд готовых фунгицидных форм: фунгин, нитрофунгин; мази: ундециновая, цинкундан, микосептин, «Ям», клотримазол, вединол, экалин, травоген; раствор «Никлофен», эпацид F, Апит. Смазывать или втирать в пораженные участки кожи 2-3 раза в день. Лечебный эффект усиливается при одновременном введении гризеофульвина или низорала. После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи втирают Carbolici cristall, Ricini и др. Ежедневно втирают в кожу больного животного для стимуляции роста волос [24].

Профилактика трихофитии у животных создает предпосылки для ликвидации трихофитии у человека <#"819476.files/image004.gif">

Рис. 4. График температуры, пульса и частоты дыхания щенка с трихофитией в дни протекания болезни.

Эпикриз

Трихофития - распространенное среди дерматомикозов собак заболевание, основными возбудителями которой являются Trichophyton verrucosum и Trichophyton mentagrophytes var. gypseum. Трихофития у собак встречается чаще чем другие дермофитии. Болеют обычно щенки, плохо питающиеся собаки, а также животные с пониженным за счет другого заболевания иммунитетом. Источником возбудителя являются больные и переболевшие животные. Это кожное заболевание передается собакам от других животных через поврежденные участки кожи, путем контакта со спорами, находящимися в земле, на игрушках и мебели.

Больная собака, французский бульдог, сука, 15.04.2012 г.р. находится на лечении с 08.07. по 18.07. 2012 года с диагнозом: нагноительная трихофития подбородка (1 очаг). При поступлении владелица собаки предъявила жалобы на появление у щенка слегка заметной сыпи на подбородке, затем произошло увеличение площади поражения, на коже образовалась красноватая корка, а также началось выпадение волос в месте поражения. 6 июля у щенка на пораженном месте образовалась лысина с четкими границами. Из-под корки начал течь гной.

Проведено обследование: физикальное, анализ на грибы, ОАК, ОАМ, БХ крови.

Проведено лечение: введена вакцина против трихофитии. Пораженные места в течение 10 дней обрабатывались раствором салициловой кислоты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 раза в день. Одновременно вводился гризеофульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день. После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи рекомендовано втирание Carbolici cristall или Ricini ежедневно.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Трихофития - (Trichophytosis), трихофитоз, стригущий лишай, инфекционная болезнь животных и человека, вызываемая несовершенными грибами рода Trichophyton, характеризующаяся у животных появлением на коже участков с обломанными волосами, покрытых корками и чешуйками. Распространена в большинстве стран мира, в том числе и в России. Т. verrucosum вызывает главным образом трихофитию крупного рогатого скота, зебу, буйволов, верблюдов, реже серебристо-чёрных лисиц, песцов. T. mentagrophytes (gypseum) - основной возбудитель трихофитии собак, кроликов, серебристо-чёрных лисиц, песцов, мышей-полёвок, сусликов, а также зверей, содержащихся в зоопарках, питомниках и др. [17].

Трихофитией болеют животные всех видов и возрастов. Источники инфекции - больные и переболевшие животные. Факторы передачи - инфицированные помещения, инвентарь. Мышевидные грызуны - постоянный резервуар T. mentagrophytes в природе.

Инфицированные возбудителями трихофитии сено, солома, пух, волос, шерсть служат источником заражения кроликов, пушных зверей, крупного рогатого скота, овец, лошадей. Микротравмы способствуют внедрению возбудителя. В зверохозяйствах, кролиководческих комплексах, откормочных совхозах, питомниках, где концентрируется большое поголовье животных, трихофития может протекать как энзоотия [21].

Переболевшие трихофитией животные приобретают длительный напряжённый иммунитет. Показатели серологических реакций (РА, РСК) сохраняются лишь 2-3 месяца, через 6-8 месяцев они могут полностью угаснуть. При поверхностной трихофитии заражение людей (особенно часто детей) происходит при контакте с больным животным и через инфицированные предметы. На коже появляются округлые розовые пятна с чёткими приподнятыми краями и шелушением в центре. В очагах на волосистой части головы волосы разрежены и обломаны. Поражённые ногти - грязно-серые, тусклые, неровные, края их утолщены, крошатся. Глубокая трихофития возникает при заражении грибами, паразитирующими у животных (особенно опасны больные трихофитией пушные звери, собаки, кролики и кошки). Отмечают воспалительные нагноившиеся узлы с корками на поверхности, облысение [35].

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1.   Авилов В.М. Ветеринария. - СПб.: Питер, 2006. - 338 с.

2.      Азаров В.Н. Основы микробиологии и санитарии. - М.: Экономика, 1996. - 205 с.

3.   Антонов В.Б., Медведева Т.В., Леина Л.М. и др. К вопросу об инфильтративно-нагноительной трихофитии // Успехи медицинской микологии. Т. 8. - М.: Национальная академия микологии, 2006. - С. 185 -187.

4.   Астраханцев В.И. Болезни собак. - М.: Колос, 2001. - 258 с.

5.      Белов Е.П. Болезни собак. - М.: Агропромиздат, 1990. - 368 с.

.        Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология.- М.: Медицинское информагенство, 2005.- 735 с.

.        Воробьев А.А. Медицинская и санитарная микробиология.- М.: Академия, 2003.- 462 с.

.        Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпретация и диагностика: [собаки, кошки, лошади, жвачные животные, свиньи]. Мейер Д., Харви Дж. - М.: Софион, 2007.- 458 с.

.        Глотова Т.И. Дерматомикозы собак и кошек в условиях города // Ветеринария, 1998, №1. С. 59-61.

.        Гинзбург А.Г. Организация и планирование ветеринарного дела. - М.: Аспект-Пресс, 2005. - 492 с.

.        Гусев М.В. Микробиология. - М.: Академия, 2009. - 464 с.

12. Евсеенко К.А. Новые горизонты медицинской микологии// Мед. новости. - 2003. - Т. 12. - С. 4-9.

13.    Кашкин П.H, Лисин В.В. Практическое руководство по медицинской микологии. - Л.: Медицина, 1990. -195 с.

14.    Kyxap E.В. Поиск антигенов для ИФА-диагностики зооантропонозной трихофитии // Проблемы мед. микол. - 2007. - Т. 2. - С. 73-74.

.        Лещенко П.Н. Лабораторная диагностика грибковых заболеваний. - М.: Медицина, 1987. - 146 с.

16. Литвинов A.M. Дерматофитозы кошек и собак (профилактика и лечение)//Ветеринария. №11, 2000. С.51-53.

17.    Луферов А.Ф. Методические рекомендации по оздоровлению домашних очагов зооантропонозной микроспории и трихофитии. - Минск: Высшая школа. 1998. - 15 с.

.        Лысак В.В. Микробиология. - Минск: БГУ, 2007. - 426 с.

19. Медведева Г.В., Антонов В.Б., Леина Л. М. и др. Трихофития: современные представления об этиологии, клинической картине, особенностях диагностики и терапии // Клин. дерматол. и венерол. - 2007. - Т. 4. - С. 70-74.

20. Медведев К.С. Болезни кожи собак и кошек / К.С. Медведев. Киев: ВИМА, 1999.-218 с.

21.    Медицинская микробиология. / Под ред. А.М. Королюка, С.Б. Стойчакова. - СПб.: ЭЛБИ, 2002.- 267 с.

.        Микробиология и иммунология. / Под ред. А.А. Воробьева.- М.: Медицина, 2005.- 492 с.

.        Минеева Л.А. Микробиология. - М.: Академия, 2010. - 464 с.

24. Нуралиев М.Д. Эпидемиология, особенности клиники и совершенствование терапии трихофитии в условиях жаркого климата. - Душанбе, 2007.- 200 с.

25. Организация и экономика ветеринарного дела / Под ред. А.Д. Третьякова. - М.: Проспект, 2001. - 260 с.

26.    Основы микробиологии, вирусологии и иммунологии. / Под ред. Ю.С. Кривошеина.- М.: Высшая школа, 2001.- 224 с.

.        Петрович С.В. Микозы животных. М.: Росагропромиздат. - 1989. - 173 с.

.        Райкис Б. Общая микробиология с вирусологией и иммунологией. - М.: Триада - Х, 2002.- 347 с.

.        Саркисов А.Х. Диагностика грибных болезней животных/А.Х. Саркисов, В.П. Королева, Е.С. Квашнина, В.Ф. Грезин // М.: Колос. - 1971. - 144 с.

.        Справочник ветеринарного врача / Под ред. Н.М. Алтухова. - М.: Колос, 1996. - 352 с.

31. Степанова Ж.В., Гребенюк В.Н., Воробьева И.А. и др. Диагностические ошибки при зооантропонозной трихофитии // Вестн. дерматол. - 2001. - Т. 6. - С. 36-38.

32. Федюк В.И. Справочник болезней собак и кошек.- М: Академия. - 2001. - 338 с.

33. Хисматуллина 3.Р. Мухамадеева О.Р. Способ выделения дерматофитов // Вестн. дерматол. - 2006. - Т. 2. - С. 25-27.

34.    Хисматуллина З.Р., Фахретдинова X.С, Мухамадеева О.Р. Зооантропонозная трихофития. - Уфа: Башкириздат, 2004. - 125 с.

35.    Arabatzis М, Bruijnesteijn van Coppenraet L.E. S., Kuijper E.J. et al. Diagnosis of common dermatophyte infections by a novel multiplex real-time polymerase chain reaction detection/identification scheme // Br. J. Dermatol. - 2007. - Vol. 157.-P. 681-689.

.        Jennings M.B., Rinaldi M.G. Confirmation of dermatophytes in nail specimens using in-office dermatophyte test medium cultures. Insights from a multispecialty survey // J.Am. Podiatr. Med. Assoc. - 2003. - Vol. 93, №3. - P. 195-202.

.        Rippon J.W. Medical mycology // The Pathogenic Fungi and the Pathogenic Actinomycetes 3rd ed. - Philadelphia: WB Saunders, 1988.

.        Weinberg J.M., Koestenblatt E.K., Tutrone W.D. etal Comparison of diagnostic methods in the evaluation of onychomycosis // J. Am. Acad. Dermatol. - 2003. - Vol. 49, №2. - P. 193-197.

.        Yang G., Zhang M., Li W. et al Direct species identification of common pathogenic dermatophyte fungi in clinical specimens by semi-nested PCR and restriction fragment length polymorphism //Mycopathologia. - 2008. - Vol. 166, №4. - P. 203-208.

40. Yan D. Detection of fungiinliquor workers with tinea corporis and tinea cruris using arbitrarily primed polymerase chain reaction // Zhonghua Lao Dong Wei Sheng Zhi Ye Bing Za Zhi. - 2007. - Vol. 25, №3. - P. 133-135.