Проточная цитофлоуметрия как метод иммунологии

ГБОУ ВПО НижГМА Росздрава

Кафедра патологической физиологии

РЕФЕРАТ

Проточная цитофлоуметрия как метод иммунологии

Выполнила: студентк 4 курса

лечебного факультета

Колесников Р.П.

Проверила: профессор кафедры

Шевченко Е.А.

Н. Новгород 2014

Содержание

Введение

Принципиальная схема устройства

Принцип работы проточного цитофлуориметра

Сравнительная характеристика приборов для проточной цитометрии

Диагностические наборы для проточной цитометрии

Литература

Введение

Первый патент на устройство, которое легло в основу проточной цитометрии, использующее принцип сопротивления Култера было зарегистрировано в США в 1953 году, его автор Wallace H. Coulter. Адсорбционные методы на тот момент были распространены гораздо шире флуоресцентных. Первый прибор, использующий флуоресценцию, был создан в 1968 году Wolfgang Göhde из University of Münster и почти сразу получил коммерческое использовани немецким разработчиком и изготовителем Партеком (Partec) в Геттингене. Новый метод быстро получил свое признание и развитие, и в период 70 х годов появилось несколько инструментов для проточной цитометрии включая Cytofluorograph (1971) от Bio/Physics Systems Inc., PAS 8000 (1973) от Partec, первые FACS оснащают датчиками от Becton Dickinson (1974), ICP 22 (1975) от Partec/Phywe и Epics от Коултера (1977/78). Изначально методику называли пульсовой цитофлоуметрией. Только 20 лет спустя в 1988, на Конференции американского Технического Фонда в Пенсаколе, штат Флорида, название было изменено на "проточную цитометрию".

проточная цитофлоуметрия иммунология диагностический

Принципиальная схема устройства

Проточный цитометр включает три основных блока:

2)      Блок обработки сигналов, где сигналы усиливаются и преобразуются в электрические.

)        Блок сбора и обработки данных.

Оптические системы

Источником света обычно служит лазер. Он способен направить на клетку интенсивный световой сигнал и создать чувствительную систему обнаружения.

Световой сигнал проходит через соответствующие линзы и зеркала и попадает на ФЭУ. На этой стадии передачи сигнала используются оптические фильтры для выделения света с определенной длиной волны, благодаря чему на каждый детектор попадает только избранный тип светового сигнала, например зеленое или красное излучение клеток при флуоресценции или рассеянный свет. Оптический блок предназначен для измерения рассеяния света и флуоресценции. Современные цитометры оборудованы несколькими фотоэлектронными умножителями, что позволяет одновременно регистрировать несколько типов флуоресценции.

Система сбора и обработки данных

Сигналы, поступающие от детекторов, усиливаются, их амплитуды измеряются и анализируются в цифровой форме для каждой клетки отдельно. Результаты анализа используются для построения распределений (гистограмм) исследованных клеток по их характеристикам.

Принцип работы проточного цитофлуориметра

Проточная цитометрия - метод исследования дисперсных сред в режиме поштучного анализа элементов дисперсной фазы по сигналам светорассеяния и флуоресценции. Название метода связано с основным приложением, а именно, с исследованием одиночных биологических клеток в потоке.

Метод проточной цитофлуориметрии широко используется в медико-биологических исследованиях. Востребованность цитометрии объясняется быстротой, точностью и надежностью метода. Определение фенотипа каждой клетки в сочетании с анализом большого количества событий дает максимально полную информацию в кратчайшие сроки.

При проведении исследования клетки, окрашенные тем или иным флуоресцентным красителем, вводят с потоком буферного раствора в вибрирующую камеру с форсункой. В каждой капле жидкости, выходящей из форсунки, содержится одна клетка. Источник света (чаще всего лазер) освещает отдельные клетки в проходящей через световой пучок тонкой струе жидкости. Исходный световой луч рассеивается клеткой. Это рассеяние измеряется с помощью фотоэлектронного умножителя (ФЭУ). Рассеяние света под малыми углами может быть использовано для определения размеров клетки. На основе данного параметра можно отличить жизнеспособные ядерные клетки от мертвых и эритроцитов. Рассеяние света под углом 90 градусов позволяет судить о соотношении размеров ядра и цитоплазмы и наличии гранул в клетке. Полученные характеристики позволяют разделить анализируемые лейкоциты на лимфоциты, моноциты, нейтрофилы.

Одновременно можно проводить анализ поверхностных и внутриклеточных антигенов клеток с помощью моноклональных антител к ним, конъюгированных с различными флуоресцентными метками. Если анализируемая клетка содержит флуорохром, то он испускает излучение соответствующих параметров, при этом интенсивность флуоресценции коррелирует плотностью антигена на клеточной поверхности, а уровень флуоресценции измеряется с помощью ФЭУ.

В практике широко используются два флуоресцентных красителя - флуоресцеин-5-изотиоционат (ФИТЦ) и R-фикоэритрин (ФЭ). Они возбуждаются аргоновым лазером и длиной волны 488 нм и излучают флуоресценцию в разных диапазонах волн: ФИТЦ излучает свет в зеленом спектре, а ФЭ - в оранжево-красном. Красители различаются как по специфичности их молекулярного связывания, так и по оптическим характеристикам, таким как спектр поглощения, возбуждение флуоресценции и др. В настоящее время спектр используемых флуорохромов расширился. Основные используемые флуорохромы: Alexa Fluor 405, Pacific Blue, AmCyan, Alexa Fluor 488, FITC, PE, PE-Texas Red, Texas Red,APC, Alexa Fluor 647 и др. А также флуорохромы, связывающиеся с ДНК: Бромистный этидий, Пропидиум йодид.

Сравнительная характеристика приборов для проточной цитометрии