Метод изотахофореза
ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ
ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
«КУРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ
УНИВЕРСИТЕТ»
(ГБОУ ВПО КГМУ МИНЗДРАВСОЦРАЗВИТИЯ
РОССИИ)
Кафедра общей и
биоорганической химии <#"660871.files/image001.gif">
Этапы разделения двух образцов при помощи
изотахофореза: Белый цвет - ведущий электролит, серый - замыкающий электролит,
заштрихованы - анализируемые образцы
2. Принцип изотахофореза
При «классическом» электрофорезе разделяемые ионы
находятся в однородном электрофоретическом буфере и движутся в электрическом
поле с разными скоростями. В условиях изотахофореза все ионы перемещаются с
одной и той же скоростью, но располагаются друг за другом в соответствии с их
подвижностями. Рассмотрим зоны, содержащие отрицательно заряженные ионы А и В с
подвижностями тА~>тв" и общим противоионом Р. При наложении электрического
поля ионы будут двигаться с одинаковой скоростью в последовательно
расположенных зонах.
Уравнение вывел Роутс. Оно представляет собой
расширенную форму регулирующей функции Кольрауша. Согласно этому уравнению,
концентрация вещества В в зоне 2 определяется концентрацией вещества А в зоне
1.
Помимо баланса электрического тока, подробно
описанного выше, существуют еще три других важных принципа, которые необходимо
иметь в виду.
Баланс масс. Концентрация противоионов в зоне должна
оставаться постоянной после достижения состояния равновесия, т. е. необходимо,
чтобы количества противоионов, входящих в зону и покидающих ее, были равны
между собой.
Электронейтральность. Число положительно и
отрицательно заряженных ионов в данной зоне одинаково.
Химическое равновесие. Содержание диссоциированных и
недисооциированных молекул определяется константами кислотно-щелочного
равновесия.
При изотахофорезе разделение ионов происходит в
соответствии с их подвижностями, а концентрация ионов в каждой зоне зависит от
концентрации предшествующего иона. Это означает, что концентрация ионов в любой
зоне определяется первым, или ведущим, ионом. Необходимо, чтобы исследуемый ион
находился между ведущим и замыкающим ионами. Последний должен обладать самой
низкой подвижностью по сравнению со всеми находящимися в системе ионами. В этом
случае ионы располагаются в такой последовательности, что ион с более высокой
подвижностью будет двигаться впереди иона с меньшей подвижностью. Поскольку в
условиях изотахофореза скорости всех ионов, как и сила тока во всех зонах,
одинаковы, согласно закону Ома, градиент напряжения в каждой зоне будет. Чем
меньше подвижность иона, тем больше перепад напряжения в этой зоне. Поэтому все
ионы приобретают одинаковую скорость, несмотря на различия в их подвижностях.
Как уже отмечалось, концентрации ионов в зонах не
могут отличаться от той, которая задана концентрацией ведущего иона и
подвижностями ведущего и исследуемого ионов. Если же концентрация какого-либо
иона, содержащегося в пробе, не подчиняется этому правилу, вытекающему из
регулирующей функции Кольрауша, то он непременно подвергнется разведению или
сконцентрируется до предписанного уровня. Вследствие этого изотахофореграмма
отличается от всех других видов фореграмм и хроматограмм. На ней высота
ступенек, образуемых сигналами, является характеристикой каждого вида иона, а
расстояние между сигналами дает информацию о числе ионов.
При изотахофорезе наряду с эффектом концентрирования
наблюдается также явление автоматического повышения резкости границ между
зонами. Рассмотрим состояние равновесия, при котором все ионы движутся с
одинаковой скоростью, и предположим, что ион О диффундировал в зону где
градиент напряжения ниже, чем в зоне А. При более низком градиенте напряжения
скорость иона снизится и он не сможет двигаться наравне с другими ионами в зоне
N. Поэтому он отстанет и снова попадет в свою зону. Если же ион О диффундирует,
наоборот, в зону R с более высоким градиентом напряжения, то приобретет там
более высокую скорость, благодаря которой этот ион опять-таки вернется в свою
зону.
Для разделения с помощью изотахофореза двух ионов
необходимо, чтобы их подвижности различались по крайней мере на 10%.
Подвижность иона зависит от нескольких параметров, например сольватации,
вязкости растворителя, диэлектрической постоянной, наконец, радиуса и заряда
иона. Ее можно изменять, варьируя растворители или рН, определяющий соотношение
между диссоциированными и недиосоциированными молекулами. Так, ионы К+ и NH+4
имеют в воде почти одинаковую подвижность, между тем они очень хорошо
разделяются в метаноле. Подвижность белков сильно зависит от рН, поэтому рН
играет решающую роль при изотахофорезе белков. Все зоны имеют разные величины
рН. В анионной системе величина рН обычно возрастает в направлении от ведущего
иона к замыкающему. При экстремальных значениях рН (ниже рН=3 и выше рН=10)
условия изотахофореза нарушаются, так как ионы Н+ и ОН сами обеспечивают
проводимость. Присутствие карбоната при высоких рН также оказывает
неблагоприятное действие. Если в анионной системе величина рН более чем на одну
единицу ниже (а в катионной системе выше), чем величины рК соответствующих
видов ионов, то эффективная подвижность окажется настолько низкой, что
возникает потребность в очень высоком градиенте напряжения, который невозможно
обеспечить доступными источниками питания. Степень варьирования рН ограничена
также буферной емкостью противоиона.
. Приборы, применяемые при изотахофорезе
Аналитический
изотахофорез проводят в капиллярном приборе для изотахофореза, в тефлоновом
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%A2%D0%B5%D1%84%D0%BB%D0%BE%D0%BD>
капилляре с внутренним диаметром 0,5 мм.
Препаративный
изотахофорез проводят в колонке с полиакриламидным гелем
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%AD%D0%BB%D0%B5%D0%BA%D1%82%D1%80%D0%BE%D1%84%D0%BE%D1%80%D0%B5%D0%B7_%D0%B2_%D0%BF%D0%BE%D0%BB%D0%B8%D0%B0%D0%BA%D1%80%D0%B8%D0%BB%D0%B0%D0%BC%D0%B8%D0%B4%D0%BD%D0%BE%D0%BC_%D0%B3%D0%B5%D0%BB%D0%B5>.
Для
получения воспроизводимых результатов очень важно выполнять следующие условия.
Изотахофорез следует проводить в трубке с совершенно одинаковым по всей ее
длине внутренним диаметром, при постоянном составе ведущего электролита;
необходимо соответствующим образом предотвратить появление электроэндосмоса и
гидродинамического тока жидкости, а также обеспечить равномерное охлаждение
трубки; буферная емкость ведущего электролита должна быть достаточно большой,
чтобы препятствовать смещению зон рН в обратном направлении по сравнению с
движением зон исследуемых веществ.
Аналитический
изотахофорез осуществляют в стеклянных или пластмассовых трубках с внутренним
диаметром 0,4- 0,6 мм и длиной 50-100 см. Длина трубки определяется той парой
ионов, которые труднее всего разделить, и зависит от величины пространства,
занимаемого этой парой ионов, и отношения их подвижностей. Иногда эта длина
оказывается слишком большой, поэтому был предложен способ противотока,
заключающийся в основном в создании тока ведущего электролита, направленного
навстречу нормальной миграции ионов, благодаря чему эффективная длина трубки
возрастает. Для регулирования температуры в трубке используют алюминиевый или
любой другой термостат. Если систему закрыть с одной стороны полупроницаемой
мембраной, то эндосмотический ток снизится до такой степени, что при разделении
небольших ионов отпадает необходимость в применении полимера.
Описана
конструкция аппарата для изотахофореза, представляющего собой единый
термостатируемый блок, включающий отсеки для электродов, входное отверстие для
пробы, неэластичные прямоугольные капилляры с поперечным сечением 0,2X1 мм и
длиной 25 см и детекторную ячейку.
Изотахофорез
можно также проводить на полосках из ацетата целлюлозы и сочетать с «классическим»
электрофорезом в опытах по двухмерному разделению.
Детекторы.
Поскольку во всех зонах создаются различные градиенты напряжения, в них
выделяется и разное количество джоулева тепла. Этот факт удается использовать
для выявления зон с помощью термометра. Применяют также детекторы проводимости
и градиенты потенциала, позволяющие регистрировать как интегральные, так и
дифференциальные кривые. Для веществ, поглощающих в ультрафиолетовом свете,
созданы высокочувствительные УФ-детекторы.
Следует
отметить, что минимальное количество изучаемого соединения, поддающееся
выявлению, зависит от концентрации ведущего иона. Уменьшение этой концентрации,
например, на порядок позволяет в такой же степени снизить наименьшее
регистрируемое количество данного вещества, поскольку возможность его выявления
в конечном счете определяется длиной соответствующей зоны. Однако слишком
сильное снижение концентрации нецелесообразно, так как в этом случае зоны могут
двигаться с разумной скоростью только ,при таком градиенте напряжения, который
невозможно создать с помощью существующих в настоящее время источников питания.
Следует избегать и чрезмерно высоких концентраций, приводящих к затруднениям,
связанным с отводом выделяющегося тепла.
Таблица 1. Детекторы, используемые при аналитическом
изотахофорезе
Тип
|
Исполнение
|
Общие сведения
|
Тепловой детектор
|
Термопара 15 мкм
(Cu-константан)
|
Качественный и
количественный детектор общего типа
|
|
Термистор (микровариант
фирмы Philips)
|
|
Кондуктометрический
детектор
|
Индикаторные микроэлектроды(1-
4кГц)
|
Качественный и
количественный детектор общего типа
|
Детектор, основанный на
измерении градиента потенциала
|
Индикаторные микроэлектроды
в сочетании с операционным усилителем-аналоговым устройством(272 J)
|
|
Детектор, основанный на
измерении УФ-поглощения
|
Микрокювета для измерений
при 205, 256 и 280 нм
|
Количественный
специфический тип детектора
|
. Изучение белков методом изотахофореза
Подвижность белков в свободном растворе примерно на
порядок ниже, чем подвижность небольших молекул. Например, для белков сыворотки
крови при рН=8,6 она составляет 1,2-7,6 В*с. Поэтому изотахофорез макромолекул
можно проводить в более коротких трубках, но вместе с тем при этом необходимо
использовать какую-либо антиконвекционную среду (обычно крупнопористый полиакриламидный
гель). В процессе изотахофореза белки могут достигать очень высоких
концентраций, часто 5-10%. Это означает, что они собираются в очень узкие зоны,
тесно прилегающие одна к другой, и поэтому их не удается различить даже с
помощью весьма чувствительных УФ-детекторов. Для того чтобы разделить белковые
зоны, Свендсен и Роуз применили амфолиты-носители, образующие линейный градиент
подвижности. Отсюда вытекает, что среди этих амфолитов-носителей всегда есть
такие, подвижность которых окажется промежуточной между подвижностями
исследуемых веществ.
В ряде работ были подробно изучены параметры
изотахофореза белков и показано, что амфолиты-носители способны выполнять роль
пространственных разобщителей (спейсеров). Отрицательная сторона их применения
заключается в том, что часть молекул амфолитов-носителей может обладать такими
же подвижностями, как и отдельные исследуемые белки, что приведет к расширению
белковых зон. Впрочем, иногда такое действие амфолитов оказывается полезным,
так как некоторые белки при слишком высокой концентрации склонны выпадать в
осадок. Применяют также и другие спейсеры, такие, как аминокислоты или слабые
кислоты. Однако требуется провести еще очень большую работу, чтобы найти
эффективные спейсеры, отвечающие предъявляемым к ним требованиям.
Изотахофорез был с успехом применен для получения
гемоглобина человека, продуктов распада фибриногена, а также при изучении
белков сыворотки крови и спинномозговой жидкости человека.
. Препаративный изотахофорез
Изотахофорез занимает особое место среди методов
очистки веществ, так как его разрешающая способность возрастает с увеличением
нагрузки. Поскольку концентрации разделяемых веществ задаются концентрацией
ведущего иона, увеличение нагрузки приводит к удлинению зон. Дэвис и Розенбаум
фракционировали с помощью препаративного изотахофореза белки, содержащиеся в 1
и 2 мл сыворотки крови человека, а затем анализировали полученные фракции
методом иммуноэлектрофореза. Описано также применение изотахофореза для
выделения миеломного белка IgD человека. В другой работе сывороточные белки
были разделены в препаративных количествах на большое число компонентов в
полиакриламидном геле, содержащем 5% Т и 3% С. Для приготовления геля применяли
фотополимеризацию в присутствии 4% рибофлавина. Авторы показали, что белки
сыворотки крови разделялись лучше, если их подвергали предварительному
фракционированию сульфатом аммония. После этого разрешающая способность
изотахофореза возрастала.
Заключение
Изоэлектрофорез
получил широкое применение при аналитическом разделении пептидов
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%9F%D0%B5%D0%BF%D1%82%D0%B8%D0%B4%D1%8B>,
белков <http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%91%D0%B5%D0%BB%D0%BA%D0%B8>,
нуклеотидов
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%9D%D1%83%D0%BA%D0%BB%D0%B5%D0%BE%D1%82%D0%B8%D0%B4%D1%8B>,
органических кислот <http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%9E%D1%80%D0%B3%D0%B0%D0%BD%D0%B8%D1%87%D0%B5%D1%81%D0%BA%D0%B8%D0%B5_%D0%BA%D0%B8%D1%81%D0%BB%D0%BE%D1%82%D1%8B>,
ионов <http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%98%D0%BE%D0%BD> металлов
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%9C%D0%B5%D1%82%D0%B0%D0%BB%D0%BB%D1%8B>
(частично изотопов <http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%98%D0%B7%D0%BE%D1%82%D0%BE%D0%BF>)
с высоким разрешением, препаративном разделение белков
<http://ru.wikipedia.org/wiki/%D0%91%D0%B5%D0%BB%D0%BA%D0%B8>,
определении электрофоретической подвижности, накоплении в виде узкой зоны следовых
количеств веществ (мкг) из больших объемов пробы вследствие эффекта
концентрирования.
Список литературы
1. К. Геккелер, Х. Экштайн.
Аналитические и препаративные лабораторные методы: Справ. изд: Перев. с нем. -
М.: Химия, 1994. - 416 с. ил.
. Сергеева Н.А. // Клин. лаб.
диагн. - 1999. - № 2. - С. 25-32.
. Титов В.Н., Амелюшкина В.А.
Электрофорез белков сыворотки крови. -М., 1994.
. Камышников В.С. Справочник
по клинико-биохимической лабораторной диагностике (в 2-х томах). Минск, 2000.
-463 С.